banner

Новости

May 03, 2024

Геном

Nature Genetics, том 55, страницы 54–65 (2023 г.) Процитировать эту статью

10 тысяч доступов

4 цитаты

67 Альтметрика

Подробности о метриках

Идентификация генов и процессов, передающих сигналы генетической ассоциации при сложных заболеваниях, представляет собой серьезную проблему. Поскольку многие генетические сигналы диабета 2 типа (СД2) оказывают свое влияние через дисфункцию островковых клеток поджелудочной железы, мы провели полногеномный объединенный скрининг потери функции CRISPR на линии бета-клеток поджелудочной железы человека. Мы оценили регуляцию содержания инсулина как показатель функции бета-клеток, связанный с заболеванием, и идентифицировали 580 генов, влияющих на этот фенотип. Интеграция с генетическими и геномными данными обеспечила экспериментальную поддержку 20 кандидатных эффекторных транскриптов СД2, включая рецептор аутофагии CALCOCO2. Потеря CALCOCO2 была связана с искажениями митохондрий, меньшим количеством проинсулинсодержащих незрелых гранул и накоплением аутофагосом при ингибировании поздней стадии аутофагии. У носителей СД2-ассоциированных вариантов локуса CALCOCO2 дополнительно наблюдалась измененная секреция инсулина. Наше исследование показывает, как клеточные экраны могут дополнить существующие мультиомные усилия для поддержки механистического понимания и предоставления доказательств причинных эффектов в локусах полногеномных ассоциативных исследований.

Полногеномные исследования ассоциаций (GWAS) выявили тысячи надежных ассоциаций для диабета 2 типа (СД2) и связанных с ним признаков, но большинство из них соответствуют некодирующим областям с вероятной регуляторной функцией1. Неполное точное картирование означает, что большинство локусов GWAS сопоставлены не с одним причинным вариантом, а с несколькими вариантами в достоверном наборе, каждый из которых потенциально может влиять на экспрессию генов в различном клеточном контексте. Типичный шаг после точного картирования включает в себя соединение предполагаемых причинных вариантов и регуляторных элементов с генами, которые они регулируют, с использованием таких методов, как колокализация локусов количественных признаков цис-экспрессии (eQTL), совместная доступность одноклеточного хроматина и анализы близости ДНК2,3 ,4,5. Ограничениями этих подходов являются их зависимость от типа клеток и контекста (анализы, проводимые в неподходящих типах клеток или состояниях, могут выявить связи вариантов с генами, не связанные с патогенезом заболевания) и молекулярная плейотропия (интересующие варианты могут регулировать транскрипцию нескольких генов в цис, скрывающий идентичность причинного транскрипта). Эти подходы могут генерировать гипотезы о потенциальных эффекторах, но обычно не дают окончательных доказательств.

Исследования возмущений могут предоставить более убедительные доказательства причинно-следственной связи, но только при использовании аутентичных моделей и фенотипов, связанных с заболеванием6. Наиболее убедительные доказательства получены из вариантов кодирования, связанных с заболеваниями, которые позволяют оценить последствия нарушений функции генов и белков у людей, но низкая частота большинства таких вариантов ограничивает этот подход2. Клеточные модели человека и технологии на основе CRISPR представляют собой привлекательную альтернативу для создания полногеномных профилей фенотипических последствий генных нарушений и понимания биологии заболеваний6. Центральное место в этом стремлении занимает уверенность в значимости того или иного типа клеток для заболевания. Что касается СД2, как физиологические, так и эпигеномные данные подчеркивают центральную роль островков поджелудочной железы и, следовательно, бета-клеток, продуцирующих инсулин, в опосредовании риска заболевания3,4,5,6,7. Существенные различия между островками или бета-клетками грызунов и человека свидетельствуют в пользу использования человеческих тканей и клеточных линий8,9,10,11,12,13. Мы и другие создали большие транскриптомные и эпигеномные ресурсы в этой ключевой ткани человека, что позволяет интегрировать генетические и геномные данные по всему геному для идентификации эффекторных транскриптов-кандидатов в локусах GWAS T2D4,7,14,15. Теперь мы дополняем эти ресурсы полногеномным скринингом потери функции (LoF) CRISPR в хорошо изученной линии бета-клеток поджелудочной железы человека EndoC-βH1 для выявления генов, которые регулируют содержание инсулина16,17,18. Иммортализованная клеточная линия EndoC-βH1 демонстрирует мультиомную сигнатуру, аналогичную первичным бета-клеткам человека, хотя и с отчетливыми характеристиками, подчеркивающими эмбриональное и трансформированное происхождение клеточной линии18,19. Хотя содержание инсулина ниже по сравнению с первичными островками, клетки EndoC-βH1 демонстрируют сходные электрофизиологические и секреторные свойства, что делает их физиологически значимой моделью для изучения функции бета-клеток in vitro17,20,21,22.

20 million paired-end reads on a NEXTSeq500 (Illumina). Fastq files were aligned to human genome reference (GRCh38) using STAR v2.7.9a (Spliced Transcripts Alignment to Reference) with ENSEMBL gene annotations (v101). Gene expression levels were counted using featureCounts (v2.0.1) on exonic reads. Differential expression was compared using the Wald test in DESeq2 (v1.26.0). P values were adjusted using the Benjamini and Hochberg method./p>

ДЕЛИТЬСЯ